Wpływ światła na biosyntezę chlorofilu 3.doc

(72 KB) Pobierz

Politechnika Śląska

Wydział Inżynierii Środowiska i Energetyki

Ochrona Środowiska

Semestr III

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

SPRAWOZDANIE Z BIOLOGII

 

TEMAT: Wpływ światła na biosyntezę chlorofilu

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

  1. Roztwory dla hodowli:

Roztwór A- woda destylowana,

Roztwór B- roztwór mineralny optymalny,

Roztwór C- roztwór bez źródła azotu,

Roztwór D- roztwór bez źródła fosforu,

Roztwór E- roztwór bez potasu,

Roztwór F- roztwór bez magnezu.

 

  1. Nastawienie hodowli roślinnych:

- Na płytkach Petriego umieścić sączki bibułowe. Sączki nawilżyć przygotowanymi roztworami wprowadzając po 2,5 ml płynu. Dla każdego z roztworów przygotować osobną płytkę.

- Na każdej z płytek umieścić nasiona.

- Płytki inkubować w temp. 22ºC. Połowę prób odczytać po 7 dniach, drugą połowę po 14 dniach.

 

TEMAT: Wpływ światła na biosyntezę chlorofilu

 

CEL ĆWICZENIA: Ocena wpływu światła na biosyntezę chlorofilu w roślinach wyższych, w tym wykazanie indukcji biosyntezy chlorofilu w roślinach etiolowanych.

 

 

Materiał:

  • podkiełkowane nasiona rzeżuchy.

 

Odczynniki:

  • roztwór mineralny optymalny
  • aceton

 

Wykonanie:

 

W 5 szkiełkach Petriego rozłożono bibułę i umieszczono kilkanaście ziarenek rzeżuchy. Następnie wypełniono roztworem mineralnym optymalnym i umieszczono w komorze fitotronowej.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Materiał:

  • liście dwu i tygodniowych siewek rzeżuchy

 

 

 

Odczynniki:

  • 100% aceton
  • 96% alkohol etylowy

·         CaCO3

 

Wykonanie:

 

Rzeżuchę (ok.0,1 g) roztarto w moździerzu z odrobiną CaCO3 następnie dodano 5 ml acetonu i dokładnie wymieszano, następnie przesączono ekstrakt przez sączek bibułowy przelano ekstrakt do kuwetki i zmierzono absorbancje.

 

 

ANALIZA MATERIAŁU ROŚLINNEGO

 

Dla każdej próby dokonać pomiaru:

  • długość łodygi i korzenia badanych roślin [mm]
  • masę łodygi i korzenia [g]
  • zawartość chlorofilów a i b [mg/g]

 

 

OBLICZEIA:

 

 

TERMIN II (po 14 dniach inkub.) Ciemnia

 

Długość korzenia [mm]

Długość łodygi [mm]

dł. łodygi/ dł. korzenia [mm]

Świeża biomasa [g]

Chlorofil [mg/g świeżej biomasy]

Chl. a

Chl. b

10

35

3,5

0,027

 

10

35

3,5

0,026

10

40

4

0,040

15

30

2

0,030

7

25

3,6

0,018

7

25

3,6

0,026

5

30

6

0,028

10

35

3,5

0,021

7

10

1,4

0,012

20

30

1,5

0,024

 

 

 

 

I długość fali 644, absorbancja 0,750

II długość fali 661, absorbancja 1,455

 

Ca= 11,24 A661,6 – 2,04 A644,8

Ca= 11,24 * 1,455 – 2,04 * 0,750 =14,8242

 

Cb = 20,13 A644,8- 4,19 A661,6

Cb= 20,13 * 0,750 – 4,19 * 1,455= 9,4525

 

Ca+b= 7,05 A661,6 + 18,09 A644,8

Ca+b = 7,05 * 1,455 + 18,09 * 0,750 = 23,82525

 

Średnia długość korzenia

10,1 mm 

Średnia długość łodygi

19,5 mm 

 

TERMIN II (po 14 dniach inkub.) Światło

Długość korzenia [mm]

Długość łodygi [mm]

dł. łodygi/ dł. korzenia [mm]

Świerza biomasa [g]

Chlorofil [mg/g świeżej biomasy]

Chl. a

Chl. b

15

45

3

0,023

...
Zgłoś jeśli naruszono regulamin