Małgorzata Michalczyk - Mechanizmy obrony antyoksydacyjnej krwi u piłkarek nożnych.pdf

(248 KB) Pobierz
Microsoft Word - Zeszyt21.doc
MECHANIZMY OBRONY ANTYOKSYDACYJNEJ KRWI
U PIŁKAREK NOŻNYCH
Małgorzata Michalczyk
Celem pracy było dokonanie oceny wpływu wysiłku o narastającej
intensywności na reakcję systemu obrony antyoksydacyjnej we krwi u
piłkarek nożnych, ocenianej na podstawie zmian aktywności enzymów
antyoksydacyjnych (dysmutazy ponadtlenkowej, peroksydazy
glutationowej, katalazy i reduktazy glutationowej), stężeń
antyoksydantów nieenzytamycznych (witamina E, zredukowany
glutation), markerów stresu oksydacyjnego (stężenie dialdehydu
malonowego i kwasu moczowego) oraz aktywności kinazy kreatynowej.
Test o narastającej intensywności był przeprowadzony na początku i na
końcu okresu przygotowawczego rundy wiosennej rocznego cyklu
treningowego. Krew żylna była pobierana przed i po wysiłku
wykonanym na ruchomej bieżni do maksymalnego zmęczenia.
Słowa kluczowe: stres oksydacyjny, wolne rodniki, antyoksydanty, piłka
nożna, wysiłek fizyczny
Wstęp
Podczas gry w piłkę nożną przeważają wysiłki biegowe o zmiennej
intensywności, podczas których wzrasta zapotrzebowanie na energię oraz
tlen. Znaczny, bo 10 do 20 krotnie zwiększony dopływ tlenu oraz prawie
100 krotny wzrost jego zużycia przez mięśnie podczas wykonywania
intensywnej pracy prowadzi do nasilenia się produkcji reaktywnych,
głównie wolnorodnikowych, form tlenu (RFT) w mięśniach
szkieletowych, krwi oraz prawdopodobnie w innych tkankach. Głównym
źródłem ich tworzenia w mięśniach jest mitochondrialny proces łańcucha
oddechowego oraz reakcja oksydazy ksantynowej, a we krwi-
127
autooksydacja hemoglobiny do methemoglobiny. RFT reagując ze
składnikami układów biologicznych prowadzą do oksydatywnej
modyfikacji ich struktury, co może prowadzić do utraty ich funkcji
życiowej, a w konsekwencji do poważnych zaburzeń procesów
metabolicznych w komórce. Z drugiej jednak strony RFT mogą
odgrywać również rolę ważnych związków sygnałowych,
zaangażowanych w procesach adaptacji komórek do zmienionych
warunków fizjologicznych.
W pracy przedstawiono reakcje metaboliczne na obciążenie
wysiłkowe, badane w warunkach laboratoryjnych, u piłkarek nożnych na
początku i na końcu okresu przygotowawczego rundy wiosennej
rozgrywek ligowych. Obserwacje dotyczą oceny potencjału
antyoksydacyjnego, aktywności wybranych enzymów komórkowych i
antyoksydacyjnych, antyoksydantów nieenzymatycznych oraz
wybranych markerów stresu oksydacyjnego w warunkach spoczynku
oraz bezpośrednio po wysiłku.
Materiał, metody i narzędzia badań
Badaniami objęto ogółem 12 kobiet w wieku od 15 do 31 lat,
zawodniczek Klubu Sportowego Czarni Sosnowiec uprawiających piłkę
nożną. Charakterystykę badanych zawodniczek przedstawiono w tabeli 1.
Tabela 1
Charakterystyka somatyczna badanych piłkarek
Średnia ± SD Minimum Maksimum
Wiek [lata]
20,3 ±4,3
15
31
Masa ciała [kg]
59,2 ± 5,6
50,9
67,9
Wysokość ciała [cm]
165,4 ±3,2
160
172
VO 2 max w badaniu 1
[mlO 2 /min/kg]
44,5±1,97
29,3
51,3
VO 2 max w badaniu 2
[mlO 2 /min/kg]
46,0±0,75
42,60
50,90
128
659582448.019.png
Test wysiłkowy
Na początku i na koniec okresu przygotowania ogólnego rundy
wiosennej (na przełomie stycznia i lutego oraz w kwietniu 2003 r. )
piłkarki wykonywały test o narastającej intensywności do
indywidualnego maksymalnego obciążenia na bieżni ruchomej (LE
300C- Jaeger). Podczas testu wysiłkowego rejestrowano pobór tlenu,
wentylację minutową płuc i częstość skurczów serca korzystając z
aparatury gazometrycznej Oxycon Alpha (Jaeger). Szybkość przesuwu
bieżni zwiększano o 2 km/godz, począwszy od 6 km/godz., co 3 min. z 1
minutową przerwą, podczas której pobierano próby krwi
kapilaryzowanej do oznaczenia stężenia mleczanu oraz parametrów
równowagi kwasowo-zasadowej. W warunkach spoczynku, przed
wysiłkiem oraz 5 min. po jego zakończeniu pobierano, do próbówek z
heparyną, jako czynnikiem antykoagulacyjnym, próby krwi żylnej do
analiz biochemicznych.
Techniki analityczne
W świeżych próbach osocza krwi oznaczano, wykorzystując zestawy
diagnostyczne firmy ANALCO, aktywność kinazy kreatynowej (CK;
EC.2.3.7.2) i dehydrogenazy mleczanowej (LD. EC.1.1.1.27) oraz
stężenie glukozy i kwasu moczowego, a ponadto stężenie amoniaku
stosując zestaw diagnostyczny firmy Boehringer. W próbach świeżej
krwi oznaczano aktywność peroksydazy glutationowej (GSH-Px;
EC.1.11.1.9) przy pomocy zestawu RANSEL (RS 505, Randox) oraz
stężenie zredukowanego glutationu (GSH) metodą Beutler’a [2].
Erytrocyty, uzyskane po odwirowaniu osocza, przemywano 3 krotnie
zimnym (4 o C) roztworem soli fizjologicznej, a następnie zamrażano (-
20 o C) do czasu wykonania oznaczeń aktywności enzymów
antyoksydacyjnych, to jest dysmutazy ponadtlenkowej (SOD;
EC.1.15.1.9) przy pomocy zestawu RANSOD (SD 125, Randox),
katalazy (CAT; EC.1.11.1.6) metodą Aebi [1] i reduktazy glutationowej
(GR; EC.1.6.4.2) metodą Glatzle [6]. Ponadto, w próbach osocza krwi
129
oznaczano stężenie witaminy E (α- i γ-tokoferoli) i retinolu techniką
HPLC według Sobczaka [7] oraz dialdehydu malonowego, jako markera
peroksydacji lipidów, metodą Buege i Aust’a [3]. W próbach pełnej krwi
oraz hemolizatach erytrocytów oznaczano stężenie hemoglobiny metodą
Drabkin’a korzystając z zestawu diagnostycznego firmy Randox
(HG 980).
Analiza statystyczna
Wszystkie wyniki przedstawiono jako średnie arytmetyczne ± SD.
Oceny istotności różnic pomiędzy wartościami przed- i powysiłkowymi
dokonano stosując testy nieparametryczne Wilcoxon’a i Mann’a-
Whitney’a, przyjmując za próg istotności wartość p<0,05.
Wyniki badań
Średnie wartości przed- i powysiłkowe wszystkich badanych
parametrów zebrano w tabeli 2.
Tabela 2
Przed- i powysiłkowe wartości aktywności wybranych enzymów oraz
stężenia antyoksydantów we krwi i jej frakcjach
Parametr
Badanie 1
X±SEM
Badanie 2
X±SEM
Kinaza kreatynowa
CK , U/l
Przed wys.
105,5 ±23,2
112,0±12,9
Po wys.
132,4±32,1*
140,0±16,9*#
Dehydrogenaza LA
LD, U/I
Przed wys.
228,4±12,46
305,5±25, 6#
Po wys.
278,3±13,14*
362,5±25,9#*
Amoniak
NH 3 , µg/dl
Przed wys.
79,4±9,80
104,4±9,9
Po wys.
148,8±17,90*
166,7±12,3*
Glukoza
mg/dl
Przed wys.
96,35±2,62
85,3±6,0#
Po wys.
158,8±8,74*
133,6±10,4*
Glutation
GSH, µg/mgHb
Przed wys.
2,94±0,13
2,82±0,16
Po wys.
3,02±0,12
3,84±0,61*
Kwas moczowy,
KM, mg/dl
Przed wys.
4,24±0,38
3,85±0,27
Po wys.
5,23±0,43*
5,32±0,20*
Witamina E
α-tokoferol, mg/l
Przed wys.
11,22±0,79
10,25±0,5
Po wys.
11,80±0,89
10,69±0,58
130
659582448.020.png 659582448.021.png 659582448.022.png 659582448.001.png 659582448.002.png 659582448.003.png 659582448.004.png 659582448.005.png
cd. tabeli 2
Witamina E
γ-tokoferol, mg/l
Przed wys.
0,64±0,09
0,46±0,07
Po wys.
0,80±0,06
0,73±0,07
Witamina A
Retinol, mg/l
Przed wys.
0,45±0,03
0,78±0,12#
Po wys.
0,45±0,03
0,84±0,05#
Dysmutaza O 2 .
SOD, U/g Hb
Przed wys.
1218,4±68,7
930,5±74,92#
Po wys.
1071,2±64,48*
782,6±56,7#*
Peroksydaza GSH
GSH-Px, U/gHb
Przed wys.
42,9±3,6
35,8±4,4
Po wys.
50,6±2,7 *
45,4±4,5*
Katalaza
CAT, k/g Hb
Przed wys.
289,9±20,3
156,4±15,9 #
Po wys.
276,9±24,3
156,7±11,3 #
Reduktaza GSH
GR-FAD + , U/gHb
Przed wys.
24,2±1,2
21,1±1,6#
Po wys.
24, 7±1,1
22,4±1,6#
Reduktaza GSH
GR+FAD + , U/gHb
Przed wys.
25,4±1,16
22,1±1,7#
Po wys.
26,1±1,2
23,1±1,6#
EGRAC
(deficyt B2 gdy>1,2)
Przed wys.
1,05±0,01
1,05±0,014
Po wys.
1,05±0,009
1,02±0,004
Dialdehyd malonowy
MDA, nmoli/ml
Przed wys.
2,24±0,46
2,81±0,37
Po wys.
2,62±0,57*
3,05±0,33*
Selen we krwi, ng/ml
Przed wys.
59,3±2,1
62,3±4,9
Uwaga: * - różnice w stosunku do wartości przedwysiłkowych statystycznie istotne
(p<0,05, test Wilcoxon’a); # - różnice w stosunku do wartości uzyskanych w badaniu
1 statystycznie istotne (p<0,05, test U Mann’a-Whitney’a)
Zarówno aktywność enzymów komórkowych, to jest kinazy
kreatynowej (CK) i dehydrogenazy mleczanowej (LD), jak i enzymów
antyoksydacyjnych oraz stężenia badanych metabolitów (glukoza, kwas
moczowy, amoniak) i antyoksydantów niskocząsteczkowych (glutation
zredukowany GSH, retinol, alfa- i gamma-tokoferole) były
indywidualnie dość zróżnicowane. Z tego względu powysiłkowe zmiany
aktywności enzymów antyoksydacyjnych były nieistotne.
Istotnie (p<0,05) wyższe od wartości spoczynkowych były
powysiłkowe aktywności CK i LD, co stanowi typową reakcję
organizmu na obciążenie wysiłkowe, świadczącą o zwiększeniu się
przepuszczalności błon komórek mięśniowych. Obserwowano przy tym
tendencję do przyjmowania wyższych spoczynkowych i powysiłkowych
aktywności CK i LD, które, za wyjątkiem spoczynkowej aktywności CK
131
659582448.006.png 659582448.007.png 659582448.008.png 659582448.009.png 659582448.010.png 659582448.011.png 659582448.012.png 659582448.013.png 659582448.014.png 659582448.015.png 659582448.016.png 659582448.017.png 659582448.018.png
Zgłoś jeśli naruszono regulamin